一种莲子提取物及其提取方法和应用与流程

1.本发明涉及莲子提取技术领域，具体涉及一种莲子提取物及其提取方法和应用。


背景技术：

2.花青素(anthocyanidin)又称花色素，是自然界一类广泛存在于植物中的水溶性天然色素，是花色苷水解而得的有颜色的苷元。水果、蔬菜、花卉中的主要呈色物质大部分与之有关。在植物细胞液泡不同的ph值条件下，花青素使花瓣呈现五彩缤纷的颜色。已知花青素有20多种，食物中重要的有6种，即天竺葵色素、矢车菊色素、飞燕草色素、芍药色素、牵牛花色素和锦葵色素。自然状态的花青素都以糖苷形式存在，称为花色苷，很少有游离的花青素存在。花青素主要用于食品着色方面，也可用于染料、医药、化妆品等方面。
3.莲子中含花青素成分，然而，现有从莲子中提取花青素的的工艺参数不佳，存在总原花青素提取率较低的问题。
4.有鉴于此，特提出本发明。


技术实现要素：

5.本发明的目的在于提供一种莲子提取物及其提取方法和应用，该提取方法通过各工艺参数的限定，能够显著提高总原花青素的提取率；此外，本技术莲子提取物能够显著抑制α-糖苷酶活性，并能够降低血糖含量。
6.为了实现本发明的上述目的，特采用以下技术方案：
7.本发明第一方面提供了一种莲子提取物的提取方法，所述提取方法包括如下步骤：
8.(a)将干燥带皮的莲子粉碎后置于水中进行浸提、过滤，收集粗提液，其中，所述浸提条件如下：料液比为1∶(40～60)，温度为45～55℃，时间为55～65min，转速为100～150r/min；
9.(b)将粗提液进行超滤处理，收集滤液；
10.(c)将滤液进行浓缩、干燥、粉碎，即得所述莲子提取物。
11.优选地，所述超滤处理采用的超滤膜为聚丙烯腈膜，截留分子量为8000da，超滤压力为1.5～2.5mpa，超滤温度为30～50℃。
12.优选地，所述浓缩采用的浓缩膜为纳滤膜或反渗透膜；所述纳滤膜的截留分子量为270da，压力为1.5mpa，温度为65℃。
13.本发明第二方面提供了一种上述提取方法提取得到的莲子提取物，所述莲子提取物中低聚原花青素的含量不低于80％。
14.本发明第三方面提供了一种上述提取方法提取得到的莲子提取物在制备α-糖苷酶抑制剂中的应用。
15.本发明第四方面提供了一种α-糖苷酶抑制剂，所述α-糖苷酶抑制剂中包括上述提取方法提取得到的莲子提取物和辅料。
16.本发明第五方面提供了一种上述提取方法提取得到的莲子提取物在制备降血糖药物和/或食品中的应用。
17.本发明第六方面提供了一种用于降血糖的药物，所述药物包括治疗有效量的上述提取方法提取得到的莲子提取物和药学上可接受的辅料。
18.优选地，所述药物剂型包括胶囊剂、片剂、粉剂和颗粒剂。
19.本发明第七方面提供了一种用于降血糖的食品，所述食品包括权利要求1～3任一所述的提取方法提取得到的莲子提取物和食品上可接受的辅料。
20.与现有技术相比，本发明的有益效果至少包括：
21.本发明提取方法经各工艺以及参数的控制，能够充分提取莲子中的花青素，显著提高了总原花青素的得率，具体达到8.9％以上，同时莲子提取物中的低聚花青素含量较高，具体达到80％以上。
22.本发明提供方法得到的莲子提取物能够显著抑制α-糖苷酶活性，并能够降低血糖含量，因此，本发明提取方法提取得到的莲子提取物能够用于制备降血糖的药物和食品。
附图说明
23.为了更清楚地说明本发明具体实施方式或现有技术中的技术方案，下面将对具体实施方式或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。在所有附图中，类似的元件或部分一般由类似的附图标记标识。附图中，各元件或部分并不一定按照实际的比例绘制。
24.图1为本发明实施例1中总原花青素的标准曲线图；
25.图2为本发明实施例1中低聚原花青素的标准品的色谱图；
26.图3为本发明实施例1中pb1的表准曲线图；
27.图4为本发明实施例1中pb4的表准曲线图；
28.图5为本发明实施例1中pb2的表准曲线图；
29.图6为本发明实施例1中超滤压力的选择结果图；
30.图7为本发明实施例1中超滤温度的选择结果图；
31.图8为本发明实施例4莲子提取物的低聚原花青素色谱图；
32.图9为本发明实施例5中莲子提取物对α
‑‑
糖苷酶活性抑制结果图；
33.图10为本发明实施例6中莲子提取物对小鼠空腹血糖的调控情况；
34.图11为本发明实施例6中莲子提取物对小鼠胰岛素抵抗系数；
35.图12为本发明实施例7中莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏nrf2信号通路的影响结果；
36.图13为本发明实施例8中莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏胰岛信号通路的影响结果；
37.图14为本发明实施例9中莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏glut2蛋白表达的影响结果；
38.图15为本发明实施例10中莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏gsk3β蛋白表达的影响结果；
39.图16为本发明实施例11中莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏pepck、g6pase蛋白表达的影响结果。
具体实施方式
40.下面将结合实施例对本发明技术方案的实施例进行详细的描述。以下实施例仅用于更加清楚地说明本发明的技术方案，因此只作为示例，而不能以此来限制本发明的保护范围。
41.需要注意的是，除非另有说明，本技术使用的技术术语或者科学术语应当为本发明所属领域技术人员所理解的通常意义。
42.实施例1
43.本实施例为莲子提取物的提取方法工艺参数的筛选：
44.以下试验中，按照db12/t 885-2019的方法进行总原花青素含量的测定；按照如下方法对低聚原花青素进行测定：
45.(1)待测液制备；
46.用甲醇以1:5料液比超声溶解制备好的莲子提取物，用0.22μm有机滤膜过滤，待上机检测；
47.(2)液相色谱条件
48.流动相比例：甲醇2％+0.3％甲酸98％
49.流速：0.5ml/min
50.梯度洗脱参数如表1所示：
51.表1
[0052][0053][0054]
总原花青素的标准曲线如图1所示，低聚原花青素的标准品色谱图如图2所示；pb1(原花青素b1)标准曲线如图3所示，pb4(原花青素b4)的标准曲线如图4所示，pb2(原花青素b2)的标准曲线如图5所示；
[0055]
1、提取方法的选择：
[0056]
取干燥的莲子皮粉，过100目筛，备用；
[0057]
准确称取1g置于100ml锥形瓶中，加入50ml水溶液提取，加塞；
[0058]
提取方式1)：放入恒温振荡器中，于50℃中水浴加热，120r/min转速下提取30min；
[0059]
提取方式2)：放入超声波清洗机中超声提取20分钟；
[0060]
提取方式3)：于微波炉中微波提取90s，微波功率设置为700w，反应完成后冷却；
[0061]
然后，进行抽滤，回收上清液，定容至200ml，测定原花青素的含量；
[0062]
经过原花青素含量的确定，提取方式1)显著高于提取方式2)和3)，因此，选择提取方式1)作为提取方法。
[0063]
2、提取工艺参数的单因素试验：
[0064]
以总原花青素的检出含量为评估指标，选择料液比、提取温度、提取时间、振荡转速四个因素进行单因素试验。
[0065]
(1)料液比对原花青素含量的影响
[0066]
以水作提取溶剂，料液比分别为1:20、1:30、1:40、1:50、1:60、1:70，提取温度50℃，提取时间60min，振荡转速为120r/min。
[0067]
(2)提取时间对原花青素含量的影响
[0068]
以水作提取溶剂，料液比为1:50，提取温度50℃，提取时间分别设为40、60、80、100、120min。振荡转速为120r/min。
[0069]
(3)提取温度对原花青素含量的影响
[0070]
以水作提取溶剂，料液比为1:50，在30、40、50、60、70℃水浴温度下提取60min。振荡转速为120r/min。
[0071]
(4)振荡转速对原花青素含量的影响
[0072]
以水作提取溶剂，料液比为1:50，提取温度50℃，提取时间60min，转速分别设置为60、80、100、120、140r/min。
[0073]
结果：水为唯一提取溶剂，料液比为1:50，提取温度为50℃，提取时间为60min，转速为120r/min，该条件下总原花青素得率可达到8.2％。
[0074]
3、超滤膜分离单因素试验：
[0075]
以透过液中原花青素纯度为评估指标，选择膜种类、超滤压力、超滤温度、超滤膜截留分子量四个因素进行单因素试验。
[0076]
(1)超滤膜种类选择
[0077]
分别采用聚丙烯腈膜(pan)、聚偏氟乙烯膜(pvdf)和聚砜膜(ps)三种不同种类，膜截留量均为10000da，超滤压力为0.6mpa，超滤温度40℃。
[0078]
(2)超滤压力对原花青素含量的影响
[0079]
用截流量为8000da的pan膜，超滤压力分别设为0.5、1、1.5、2、2.5mpa，超滤温度设为40℃。
[0080]
(3)超滤温度对原花青素含量的影响
[0081]
用截流量为8000da的pan膜，超滤压力为0.6mpa，超滤温度分别设为20、30、40、50、60℃。
[0082]
(4)截留分子量对原花青素含量的影响
[0083]
分别用截留分子量为4000、6000、8000、10000、12000da的pan膜，超滤压力设为0.6mpa，超滤温度设为40℃。
[0084]
试验结果：
[0085]
通过不同超滤膜种类试验，得出采用聚丙烯腈膜得到的总原花青素含量显著高于其他膜，因此，选择聚丙烯腈膜作为超滤膜。
[0086]
超滤压力的选择结果如图6所示，由图6可知，选择超滤压力选为1.5～2.5mpa；
[0087]
截留分子量的选择结果如表2所示：
[0088]
表2
[0089][0090]
由表2可知，截留分子量选择8000da，太低总原花青素和低聚原花青素转化率(即通过超滤膜的含量)较低；太高导致总物质转化率太高(即花青素之外的其他杂质太多)。
[0091]
超滤温度的选择结果如图7所示，由图7可知，选择30～50℃最佳，低聚原花青素转化率达到96.4％以上，温度过高和过低均影响低聚原花青素的转化率。
[0092]
4、纳滤膜单因素试验：
[0093]
以截留液中原花青素含量为评估指标，选择纳滤膜压力、温度、膜截留分子量三个因素进行单因素试验。
[0094]
(1)纳滤膜截留分子量的选择
[0095]
根据截留分子量不同选用不同规格型号的纳滤膜，截留分子量分别为160、270、360、750da，不同规格的纳滤膜适应的压力范围为1.5-5.5mpa，适用温度范围为65-85℃。
[0096]
(2)纳滤膜压力对膜通量的影响
[0097]
选用截留分子量为270da的纳滤膜，纳滤膜压力分别设置为0.5、1.0、1.5、2.0、2.5mpa，温度设置为65℃。
[0098]
(3)纳滤膜温度对膜通量的影响
[0099]
选用截留分子量为270da的纳滤膜，纳滤膜压力设置为1.5mpa，温度设置为65、75、85℃。
[0100]
试验结果表明：选用截留分子量为270da的纳滤膜，纳滤膜压力设置为1.5mpa，温度设置为65℃为纳滤最佳参数，总原花青素和低聚原花青素转化率最高。
[0101]
实施例2
[0102]
本实施例为一种莲子提取物的提取方法，所述提取方法包括如下步骤：
[0103]
(a)将干燥带皮的莲子粉碎后置于水中进行浸提、过滤，收集粗提液，其中，所述浸提条件如下：料液比为1∶40，温度为55℃，时间为55min，转速为100r/min；
[0104]
(b)将粗提液进行超滤处理，收集滤液，其中，超滤处理采用的超滤膜为聚丙烯腈膜，截留分子量为8000da，超滤压力为2.5mpa，超滤温度为30℃；
[0105]
(c)采用截留分子量为270da的纳滤膜在1.5mpa、65℃下对滤液进行浓缩、干燥、粉碎，即得所述莲子提取物。
[0106]
计算总原花青素得率为8.9％，莲子提取物中低聚原花青素的含量为81.2％。
[0107]
实施例3
[0108]
本实施例为一种莲子提取物的提取方法，所述提取方法包括如下步骤：
[0109]
(a)将干燥带皮的莲子粉碎后置于水中进行浸提、过滤，收集粗提液，其中，所述浸提条件如下：料液比为1∶60，温度为45℃，时间为65min，转速为150r/min；
[0110]
(b)将粗提液进行超滤处理，收集滤液，其中，超滤处理采用的超滤膜为聚丙烯腈膜，截留分子量为8000da，超滤压力为1.5mpa，超滤温度为50℃；
[0111]
(c)采用截留分子量为270da的纳滤膜在1.5mpa、65℃下对滤液进行浓缩、干燥、粉碎，即得所述莲子提取物。
[0112]
计算总原花青素得率为9.1％，莲子提取物中低聚原花青素的含量为83.6％。
[0113]
实施例4
[0114]
本实施例为一种莲子提取物的提取方法，所述提取方法包括如下步骤：
[0115]
(a)将干燥带皮的莲子粉碎后置于水中进行浸提、过滤，收集粗提液，其中，所述浸提条件如下：料液比为1∶50，温度为50℃，时间为60min，转速为120r/min；
[0116]
(b)将粗提液进行超滤处理，收集滤液，其中，超滤处理采用的超滤膜为聚丙烯腈膜，截留分子量为8000da，超滤压力为2mpa，超滤温度为40℃；
[0117]
(c)采用截留分子量为270da的纳滤膜在1.5mpa、65℃下对滤液进行浓缩、干燥、粉碎，即得所述莲子提取物。
[0118]
上述得到的莲子提取物中低聚原花青素色谱图如图8所示，计算总原花青素得率为9.8％，莲子提取物中低聚原花青素的含量为86.4％。
[0119]
实施例5
[0120]
本实施例为实施例4莲子提取物抑制α-糖苷酶活性的研究：
[0121]
反应系统为67mmol/l磷酸钾缓冲液(37℃，ph6.8)870μl，1mg/ml谷胱甘肽溶液25μl，2.74u/mlα-葡萄糖苷酶溶液35μl，20μl莲子提取物(5.0、10.0、15.0、20.0、25.0、30.0mg/ml)；37℃水浴保温10min后，加入15mmol/lpnpg溶液70μl，水浴中保温10min，加入4ml 0.1mol/l na2co3溶液，以空白管调零，于波长405nm处测定吸光度(a)。
[0122]
α-葡萄糖苷酶抑制率计算公式如下：酶活性抑制率(％)＝[1－(a样品－a背景)]/(a酶－a空白)
×
100％。其中，a样品＝酶液+还原谷胱甘肽溶液+样品溶液+pnpg溶液，a背景＝酶液+还原谷胱甘肽溶液+样品溶液，a酶＝酶液+还原谷胱甘肽溶液+pnpg溶液，a空白＝酶液+还原谷胱甘肽溶液，体积均用缓冲液补足。
[0123]
试验结果如图9所示，由图9可知，莲子提取物对于α-糖苷酶活性具有抑制作用，30.0mg/ml的莲子提取物对α-糖苷酶活性的抑制率可达到68.24％。计算可得，莲子提取物对于α-糖苷酶的ic50为11.69mg/ml。
[0124]
实施例6
[0125]
本实施例为实施例4莲子提取物对小鼠血糖的研究：
[0126]
试验材料：
[0127]
动物：spf级8周龄雄性db/db小鼠32只；正常8周龄雄性c57bl/6小鼠8只；(实验动物使用许可证号：syxk(湘)2015-0016)
[0128]
受试物：本发明莲子提取物，莲子提取物低剂量组(l-lse)、莲子提取物高剂量组(h-lse)。
[0129]
阳性对照药：二甲双胍组(met)。
[0130]
主要试剂与仪器：葡萄糖检测试剂盒，胰岛素检测试剂盒，自动生化分析仪，离心机等。
[0131]
实验方法：spf级雄性db/db糖尿病小鼠，在禁食12h后，空腹血糖高于11.1mmol/l
代表建模成功，并随机分为4组，分别为模型对照组(model)、二甲双胍组(met)、莲子提取物低剂量组(l-lse，250mg/kg)和莲子提取物高剂量组(h-lse，500mg/kg)。取额外8只相同周龄的c57bl/6小鼠作为正常对照组(control)。每组小鼠每次一次，按20ml/kg进行药物灌胃。试验期间，每周定期监测小鼠血糖，给药后，禁食12h，尾部采血的测定。使用相应的试剂盒检测血清中胰岛素、葡萄糖。胰岛素抵抗系数＝空腹血糖(mmol/l)
×
空腹胰岛素(miu/l)/22.5。
[0132]
试验结果如图10、图11所示：
[0133]
由图10可知，莲子提取物可以降低db/db糖尿病小鼠的空腹血糖。空白对照组的空腹血糖为7.2
±
1.0mmol/l，模型组为25.6
±
5.3mmol/l，两者之间有显著性差异(p《0.05)。每天灌胃300mg/kg二甲双胍，阳性药物组可以很大程度上降低db/db糖尿病小鼠的血糖，从25.6
±
5.3mmol/l下降到15.0
±
2.6mmol/l。而莲子提取物也有类似效果，以剂量依赖性降低血糖，低剂量为17.3
±
5.3mmol/l，高剂量为16.0
±
4.1mmol/l。这三组都与模型组存在显著性差异(p《0.05)。
[0134]
由图11可知，模型组存在严重的胰岛素抵抗现象，胰岛素抵抗指数为71.7
±
13.6，而空白对照组只有4.4
±
1.8。二甲双胍比莲子提取物降低胰岛素抵抗指数效果更好，为15.2
±
5.0，具有极显著差异(p《0.01)。而低、高剂量组分别为26.6
±
2.9、24.2
±
10.7，与模型组比较都具有极显著差异(p《0.01)。
[0135]
实施例7
[0136]
本实施例为实施例4莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏nrf2信号通路的影响：
[0137]
对db/db小鼠肝脏nrf2、nqo1、ho-1蛋白表达情况进行检测，检测结果如图12所示，由图12可知，莲子提取物可以促进nrf2，ho-1和nqo1这三种抗氧化蛋白的表达，而在模型组中，这三种抗氧化蛋白表达受到抑制。nrf2在莲子提取物低剂量组相对表达量较高，为2.11，而模型组相对表达量只有0.99，二甲双胍组为1.75。莲子提取物以剂量依赖性增强ho-1表达，相对表达量分别为1.46和3.47，而模型组的ho-1相对表达水平只有0.70。莲子提取物同样也促进nqo1表达，低剂量表达量为2.87，高剂量表达量为3.10，与模型组的表达量1.38具有显著性差异。
[0138]
实施例8
[0139]
本实施例为实施例4莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏胰岛信号通路的影响：
[0140]
对糖尿病小鼠肝脏irs1和akt磷酸化蛋白表达进行检测，检测结果如图13所述，由13可知，在抗氧化信号通路被激活后，糖尿病小鼠肝脏的氧化应激状态得到缓解，莲子提取物组irs1磷酸蛋白水平得到显著增加，莲子提取物高剂量组蛋白表达水平为1.28，而模型组为0.61，两者有显著性差异(p《0.05)。同时，akt磷酸化表达也得到增强，莲子提取物低剂量组为1.49，莲子提取物高剂量组为2.21，二甲双胍组为1.699，而模型组的表达力只有0.60，与二甲双胍组和莲子提取物高剂量组有极显著差异(p《0.01)，与莲子提取物低剂量组和空白对照组有显著差异(p《0.05)。
[0141]
实施例9
[0142]
本实施例为实施例4莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏glut2蛋白表达的影响：
[0143]
glut2是葡萄糖进入肝脏细胞重要的通道蛋白，对db/db小鼠肝脏glut2蛋白表达情况进行检测，检测结果如图14所示，由图14可知，glut2在模型组小鼠肝脏中表达受到抑
制，模型组相对表达量为0.66，而二甲双胍组为1.50，有显著性差异(p《0.05)。莲子提取物低剂量和高剂量组的表达量得到提升，分别为1.09和1.13。
[0144]
实施例10
[0145]
本实施例为实施例4莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏gsk3β蛋白表达的影响：
[0146]
gsk3β是控制肝脏糖原合成的蛋白，当它磷酸化表达被激活时，糖原合酶随之活化，促进肝糖原合成，对db/db小鼠肝脏gsk3β蛋白表达情况进行检测，检测结果如图15所示，由图15可知，模型组gsk3β磷酸化蛋白的表达受到严重抑制，表达量为0.26，与空白组具有极显著差异(p《0.01)。二甲双胍组和莲子提取物低剂量组都促进了gsk3β磷酸化蛋白表达，表达量分别为0.46和0.42，而莲子提取物高剂量组为0.71，与模型组比较有极显著差异(p《0.01)。
[0147]
实施例11
[0148]
本实施例为实施例4莲子提取物对糖尿病小鼠肝脏pepck、g6pase蛋白表达的影响：
[0149]
肝脏是机体饥饿时，产生葡萄糖的重要器官，通过糖异生作用产生大量的葡萄糖，而pepck和g6pase是调控糖异生作用的关键酶，当表达量增加时，可以促进肝细胞合成葡萄糖，对糖尿病小鼠肝脏pepck、g6pase蛋白表达情况进行检测，检测结果如图16所示，由图16可知，pepck表达量在模型组中显著升高，为1.53，与空白对照组有显著差异(p《0.05)。而二甲双胍组和莲子提取物低剂量组分别为0.94和1.05，表达量恢复至正常水平。莲子提取物高剂量组为0.81，与模型组有极显著差异。控制糖异生的另一种蛋白表达趋势也类似，g6pase在模型组中显著升高，相对表达水平为2.10，而二甲双胍和莲子提取物低剂量分别为1.20和1.31，莲子提取物高剂量组为1.03，恢复至正常水平，与模型组有显著差异(p《0.05)。
[0150]
最后应说明的是：以上各实施例仅用以说明本发明的技术方案，而非对其限制；尽管参照前述各实施例对本发明进行了详细的说明，本领域的普通技术人员应当理解：其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分或者全部技术特征进行等同替换；而这些修改或者替换，并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的范围，其均应涵盖在本发明的权利要求和说明书的范围当中。

技术特征：
1.一种莲子提取物的提取方法，其特征在于，包括如下步骤：(a)将干燥带皮的莲子粉碎后置于水中进行浸提、过滤，收集粗提液，其中，所述浸提条件如下：料液比为1∶(40～60)，温度为45～55℃，时间为55～65min，转速为100～150r/min；(b)将粗提液进行超滤处理，收集滤液；(c)将滤液进行浓缩、干燥、粉碎，即得所述莲子提取物。2.根据权利要求1所述的提取方法，其特征在于，所述超滤处理采用的超滤膜为聚丙烯腈膜，截留分子量为8000da，超滤压力为1.5～2.5mpa，超滤温度为30～50℃。3.根据权利要求1所述的提取方法，其特征在于，所述浓缩采用的浓缩膜为纳滤膜或反渗透膜；所述纳滤膜的截留分子量为270da，压力为1.5mpa，温度为65℃。4.权利要求1～3任一所述的提取方法提取得到的莲子提取物，其特征在于，所述莲子提取物中低聚原花青素的含量不低于80％。5.权利要求1～3任一所述的提取方法提取得到的莲子提取物在制备α-糖苷酶抑制剂中的应用。6.一种α-糖苷酶抑制剂，其特征在于，所述α-糖苷酶抑制剂中包括权利要求1～3任一所述的提取方法提取得到的莲子提取物和辅料。7.权利要求1～3任一所述的提取方法提取得到的莲子提取物在制备降血糖药物和/或食品中的应用。8.一种用于降血糖的药物，其特征在于，所述药物包括治疗有效量的权利要求1～3任一所述的提取方法提取得到的莲子提取物和药学上可接受的辅料。9.根据权利要求1所述的药物，其特征在于，所述药物剂型包括胶囊剂、片剂、粉剂和颗粒剂。10.一种用于降血糖的食品，其特征在于，所述食品包括权利要求1～3任一所述的提取方法提取得到的莲子提取物和食品上可接受的辅料。

技术总结
本发明公开了一种莲子提取物及其提取方法和应用，所述提取方法包括：将干燥带皮的莲子粉碎后置于水中进行浸提、过滤，收集粗提液，其中，所述浸提条件如下：料液比为1∶(40～60)，温度为45～55℃，时间为55～65min，转速为100～150r/min；将粗提液进行超滤处理，收集滤液；将滤液进行浓缩、干燥、粉碎，即得所述莲子提取物；本发明提取方法经各工艺以及参数的控制，能够充分提取莲子中的花青素，显著提高了总原花青素的得率，具体达到8.9％以上，同时莲子提取物中的低聚花青素含量较高，具体达到80％以上；本发明莲子提取物可以用于制备降血糖的食品和药物。品和药物。品和药物。


技术研发人员：覃思 吕承豪 傅孝美 陈中
受保护的技术使用者：长沙智生源生物科技有限公司
技术研发日：2023.05.31
技术公布日：2023/8/28